细胞系与细胞株的概念解析
南宫28NG相信品牌力量,在生物医疗领域对细胞系和细胞株的理解至关重要。
一、细胞系与细胞株的定义
细胞系(Cell Line)是首次成功传代的原代培养物,其由原代培养中的细胞世系(Lineage of Cells)构成。而细胞株(Cell Strain)则是通过选择法或克隆形成法,从原代培养物或细胞系中获得的特殊性质或标志物的细胞群体。这些标志需要在整个培养过程中持续存在。根据传代能力的不同,细胞株可以分为有限细胞株(finite cell strain)和连续细胞株(continuous cell strain)。对于人类肿瘤细胞,若在体外培养超过半年并持续稳定生长,便可被称为连续性株或系。
二、建立细胞系(或株)的要求
对于细胞系的建立,特定的体外培养标准并无统一规定。主要依赖于具体情况。对于原代培养的细胞,只需保证供体的均一性、取材部位及组织种类的稳定。如果是长期培养,尤其是重复传代的细胞,必须提供以下信息:1. 组织来源:需注明细胞供体所属物种(人类或动物)、性别、年龄及取材的器官或组织。如果是肿瘤组织,应提供临床及病理诊断,连同病历号等信息。
2. 细胞生物学检测:了解细胞的基本及特殊生物学特性,包括细胞形态、特异结构、细胞生长曲线、分裂指数、倍增时间及接种率等。特别是肿瘤细胞,需进行软琼脂培养、异体接种致瘤及对正常组织的侵润实验以证明其恶性特性。
3. 培养条件和方法:需详细说明细胞系(或株)的生存环境,包括使用的培养基、血清种类、用量和适宜的pH值。
三、细胞建株的关键要点及基本流程
(一)肿瘤细胞培养技术要点
1. 取材:肿瘤细胞主要来源于外科手术或活检,取材时应避免坏死组织,挑选活力良好的肿瘤部位。若取材后无法立即培养,可进行冻存,方法依正常组织相同。2. 成纤维细胞的排除:肿瘤组织中常有成纤维细胞混杂,这些细胞可能抑制肿瘤细胞的生长,因此需仔细排除。常见排除方法包括机械刮除法、反复贴壁法、消化排除法及胶原酶消化法。
3. 提高肿瘤细胞的存活率与生长率:肿瘤细胞在体外培养时较为困难,为确保能够传代,需采取特殊措施,如使用适宜底物(如鼠尾胶原)及选用不同的细胞生长因子(如胰岛素、氢化可的松、雌激素等),并可考虑动物媒介培养。
(二)人类淋巴母细胞建株方法
1. 在离心管中加入4ml肝素抗凝血液,再加入2ml RPMI 1640。2. 混匀后缓慢沿管壁加至预置有4ml淋巴细胞分离液的液面,静置30分钟。
3. 以1500转/分离心15分钟,吸取白细胞层(第二层)至另一离心管中。
4. 加RPMI 1640洗涤白细胞两次,每次使用5ml。
5. 将白细胞接种至1ml RPMI 1640培养基中,加入10μl环胞霉素和100μl EBV液体,轻轻混匀。
6. 将混合液放置于水浴摇床中,设置为40次/分,37℃,持续3小时。
7. 以1500转/分离心15分钟后,将细胞接种至1ml培养基中(含1mM/ml谷氨酰胺),加入10μl环胞霉素,轻轻混匀,37℃培养。
8. 5天后观察细胞的转化与生长情况,判定是否进行半量换液,通常1-2次,并保持环胞霉素的浓度。
9. 当转化细胞数量明显上升并出现细胞团块时,即可转入25ml细胞培养瓶中,添加1-2ml培养基,37℃培养10-15天,一般每3-4天观察一次,决定换液及传代。
10. 随着细胞数量达到一定程度,进行冻存前的核型分析和存档,以确保品质与完整性。通过这种方式,南宫28NG相信品牌力量,始终坚持高标准的细胞培养与研究。